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Plâncton

Plâncton 2017-06-21T09:00:04+00:00

Controle da Qualidade da Água em Bacias Hidrográficas e Mar

Plâncton é formado de organismos microscópicos, incluindo algas e protozoários, que flutuam à deriva em grande número em água doce ou salgada e servem de alimento para peixes e outros organismos maiores. O plâncton é formado pelo fitoplâncton, que são plantas microscópicas e pelo zooplâncton que são os animais microscópicos.

 

Informações gerais sobre como coletar amostras de plâncton:

Existem vários métodos para a amostragem do plâncton de um lago ou lagoa. O método mais comum é puxar uma rede fina através da água, na vertical ou na horizontal, e depois recolher os animais que tenham sido retidos pela rede. Um outro método comum é a utilização de um dispositivo em forma de caixa chamada de armadilha Schindler-Patalas.

A escolha de um método particular ou um conjunto de métodos depende das características do lago (profundidade, densidade de algas, etc.) e o próprio zooplâncton.

Quantas amostras?

O zooplâncton pode exibir um alto grau de variação espacial, mesmo considerando apenas a região de águas abertas de um lago e além disso existem outros fatores incluindo correntes de água e rápido crescimento da população em locais onde a biomassa de fitoplâncton é alta.

Existem métodos estatísticos para identificar o número de amostras necessário para caracterizar com precisão o zooplâncton em um determinado momento em um lago. Isso requer amostragem preliminar em muitos locais e algumas estatísticas simples. Um estudo preliminar fornece o contexto, de modo que o investigador pode interpretar os resultados da amostragem.

Se um estudo tem como objetivo geral caracterizar o zooplâncton de uma determinada região geográfica, e requer amostragem de muitos lagos, ele só pode ser viável para provar um local em cada lago ou grande bacia de lagos. Em reservatórios alongados, as amostras são tipicamente recolhidas em vários locais ao longo do eixo devido à química distinta da água, fitoplâncton e zooplâncton.

Resumindo, o regime de amostragem deve ser baseado em uma sólida compreensão das condições do lago e das perguntas feitas no projeto de pesquisa.

Frequência de Amostragem

Biomassa de zooplâncton pode variar consideravelmente de mês a mês e entre anos sucessivos. Rápido aumento na biomassa pode ocorrer em apenas uma semana em resposta a uma floração de algas e bactérias ou a um aumento na temperatura da água. Quedas súbitas na biomassa podem acontecer em resposta à intensa predação dos peixes, colapso da proliferação de algas, e outros fatores.

O investigador deve realizar alguns preliminares de amostragem com uma frequência relativamente alta, a fim de compreender a medida entre os picos principais de biomassa zooplâncton ou alterações importantes na estrutura taxonómica.

Métodos de amostragem

São três os métodos comuns de amostragem. As redes são utilizadas na maioria das vezes; são dispositivos cônicos feitos de nylon de malha fina que é puxada através da água na vertical ou na horizontal, por uma distância conhecida. Os animais são capturados num frasco de armazenamento para a contagem. A quantidade de água a partir do qual são removidos zooplâncton está estimado como o comprimento do reboque vezes boca diâmetro do líquido.

O amostrador tipo armadilha mais comum é a armadilha Schindler-Patalas: é uma caixa de plástico transparente levada a uma profundidade desejada na coluna de água e, em seguida, rapidamente fechada e puxada para cima e levantada na água. Quando levantada para o barco, a água é filtrada numa pequena rede de malha que é fixada à parede inferior da caixa, e zooplâncton fica recolhido dentro de um balde de recolha de amostras.

Este dispositivo proporciona um elevado grau de certeza sobre o volume real da amostra de água, mas se a coluna de água é profunda, e são muitas amostras para recolher animais de todas as profundidades.

O terceiro método é um tubo, feito de PVC comum ou Tygon. Um tubo é baixado para dentro da coluna de água, e quando a parte inferior atinge a profundidade desejada (perto dos sedimentos), uma linha é puxada para fechar o fundo com uma rolha de borracha ou outro dispositivo. O tubo é levantado para dentro do barco e a água coletada é filtrada através de uma rede para recolher o zooplâncton. Este dispositivo proporciona também um elevado grau de certeza sobre o volume de água da amostra, mas pode não ser uma forma eficaz de amostra para grandes animais que ocorrem a uma densidade baixa, ou de animais que podem detectar e escapar do dispositivo.

Preservação da Amostra

Preserve o zooplâncton recentemente colhido com solução de formol-sacarose 40% refrigerada a cerca de 5 graus C antes do uso. Adicionar cerca de 2 gramas de sacarose (açúcar de mesa). Adicione uma quantidade suficiente de conservante à amostra para se atingir uma concentração final de cerca de 40% de formalina. A formalina preserva os animais. O efeito combinado de sacarose, resfriamento e preservativo evita a distorção de corpos. Mantenha as amostras conservadas em recipientes herméticos sob condições de refrigeração para obter melhores resultados.

Contagem e estimativa de biomassa

Simples contagens de zooplâncton podem ser feitas com um microscópio. Para espécies grandes de zooplâncton tais como dáfnias, que ocorrem em densidades relativamente baixas (1 a 100 por litro), a amostra pode ser digitalizada com uma ampliação baixa. Para zooplâncton como rotíferos e náuplios de copépodes, que ocorrem em densidades elevadas (> 1000 por litro), é prática padrão contar uma percentagem conhecida do volume da amostra em alta ampliação, e depois multiplicar pelo volume total / volume contado a obter o número total de animais na amostra.

Depois de saber o número de animais de cada espécie em uma amostra, a densidade no lago é estimado como contagens dividindo pelo volume de água filtrada com a rede ou coletadas pela armadilha ou tubo.